| начало :: поиск :: подписка :: издатели :: карта сайта | |
| Том 07/N 2/2005 | ИНФЕКЦИИ В ХИРУРГИИ |
Р
аспространенность инфекций в области хирургического вмешательства (ИОХВ) приводит к увеличению стоимости лечения пациентов, госпитализированных в хирургические отделения [1]. Среди всех инфекционных осложнений, развивающихся у оперированных пациентов, на долю ИОХВ приходится до 40%, из них 2/3 связаны с областью операционного разреза, а 1/3 затрагивает орган или полость. При экстраабдоминальных вмешательствах ИОХВ развиваются у 2–5% госпитализированных пациентов, при вмешательствах на брюшной полости – у каждого пятого пациента [2, 3].Определение антибактериальной
профилактики
Под АБП понимают назначение
пациенту антибактериального препарата до
микробной контаминации операционной раны
или развития ИОХВ, а также при наличии
признаков контаминации, когда первичным
методом лечения является хирургическое
вмешательство, а назначение антибиотика
имеет своей целью снизить до минимума риск
развития ИОХВ. Cнижение частоты ИОХВ
является основной целью АБП, и адекватный
выбор антибактериального препарата также
способствует уменьшению риска развития
послеоперационных септических осложнений
и летального исхода [10].
Существуют различия в назначении
антибактериальных препаратов с
терапевтической и профилактической целью.
В первом случае препараты назначают для
лечения уже имеющейся диагностированной
инфекции при госпитализации пациента для
выполнения экстренного хирургического
вмешательства, что позволяет снизить риск
развития ИОХВ, но является вторичным
эффектом.
Критерии и классификация инфекций
области хирургического вмешательства
Далеко не все пациенты,
подвергающиеся абдоминальным операциям,
нуждаются в профилактическом назначении
антибиотиков. Неоправданное применение
антибиотиков повышает стоимость лечения и
способствует появлению и распространению
резистентных штаммов микроорганизмов [16].
При абдоминальных вмешательствах АБП
показана в случае, если операция
сопровождается нарушением целостности
полых органов и попаданием микрофлоры
кишечника в область операционной раны.
Исключение могут составлять плановые
оперативные вмешательства на желудке при
язвенной болезни, когда высокая
кислотность желудочного сока значительно
снижает плотность микробной контаминации,
что служит причиной низкой частоты ИОХВ [17].
Все послеоперационные инфекции,
согласно критериям, разработанным CDC, США,
подразделяются на две группы: инфекции
разреза и инфекции органа/полости [18].
Первые подразделяются на инфекции,
вовлекающие только кожу и подкожные ткани (поверхностные
инфекции разреза), и инфекции c вовлечением
глубоких мягких тканей в месте разреза (глубокие
инфекции разреза). ИОХВ органа/полости
вовлекают любые органы или полости, которые
были вскрыты или подвергались манипуляциям
в процессе операции (см. рис. 1).
Одним из ключевых факторов,
влияющих на развитие ИОХВ, является степень
микробной обсемененности операционной
раны. В зависимости от нее выделяют чистые,
условно-чистые, контаминированные и
грязные операционные раны (табл. 1). Данная
классификация базируется на
послеоперационной оценке уровня микробной
контаминации раны, в то время как решение о
назначении АБП принимается хирургом до
начала операции. При операциях с
образованием чистых ран (грыжесечение и др.)
АБП не проводят. АБП показана при
оперативных вмешательствах с
формированием условно-чистых (операции на
пищеводе, желудке, двенадцатиперстной
кишке и др.) и контаминированных (острый
неперфоративный негангренозный аппендицит,
холецистит) ран с целью снижения частоты
послеоперационной инфекции (с 10 до 1–2% и с 22
до 10% соответственно). При “грязных” ранах (перфоративный
аппендицит и др.), даже если АБП проводилась
в предоперационном периоде, после операции
в обязательном порядке назначается
антибактериальная терапия [19].
Возбудители инфекций области
хирургического вмешательства
Необходимым фактором развития
ИОХВ является микробная контаминация
области хирургического вмешательства. Риск
ИОХВ традиционно выражается в соответствии
со следующей зависимостью [20, 21]:
|
Доза бактериальной контаминации |
Риск развития инфекции |
|
|
------------------------------------------------- |
= |
|
|
Резистентность организма пациента |
Наиболее частыми возбудителями
ИОХВ, по данным NNIS, являются Staphylococcus aureus,
коагулазонегативные стафилококки, Enterococcus
spp. и Escherichia coli (табл. 2).
В последнее время увеличилось
число публикаций о развитии ИОХВ, вызванных
метициллинорезистентными Staphylococcus aureus,
а также Candida albicans [22, 23, 24].
Для большинства
послеоперационных раневых инфекций
источником возбудителя является
эндогенная флора кожи, слизистых оболочек
или полых органов пациента [21]. При разрезе
слизистых оболочек или кожи возникает риск
контаминации тканей эндогенной флорой,
представленной аэробными
грамположительными кокками (стафилококки).
Однако может встречаться фекальная флора (анаэробные
бактерии и грамотрицательные аэробы), когда
разрез выполняется рядом с промежностью
или паховой областью. Если во время
операции вскрывается орган желудочно-кишечного
тракта, то типичными возбудителями
являются грамотрицательные палочки (E. coli),
грамположительные микроорганизмы (энтерококки)
и анаэробы (Bacteroides fragilis) [25, 26, 27].
В абдоминальной хирургии спектр
возбудителей послеоперационных инфекций
также варьирует в зависимости от отдела
желудочно-кишечного тракта, на котором
выполняется оперативное вмешательство. Так,
при гастродуоденальных операциях наиболее
частыми возбудителями ИОХВ являются
колиформные бактерии (E. coli, Proteus spp., Klebsiella
spp.), реже – грамположительные кокки и еще
реже – Bacteroides spp. [28, 29, 30].
При операциях на желчевыводящих
путях из источника инфекции наиболее часто
выделяют E.coli и Klebsiella spp., значительно
реже – другие грамотрицательные
микроорганизмы, стрептококки или
стафилококки. Среди анаэробов наиболее
часто встречаются Clostridium spp. [31, 32, 33, 34, 35].
При аппендицитах преобладающими
возбудителями являются анаэробные и
аэробные грамотрицательные микроорганизмы,
из которых B. fragilis и E. coli – самые
частые анаэробы и аэробы. Таким образом,
собственная флора кишечника при
аппендиците является основным источником
возбудителей ИОХВ. Грамположительные кокки
также регистрируются в некоторых случаях, а
Pseudomonas aeruginosa выделяется крайне редко [25,
36].
Экзогенные источники
возбудителей ИОХВ включают хирургический
персонал (в большей степени членов
хирургической бригады), окружающую среду
операционной, а также все оборудование,
инструменты и материалы, попадающие на
стерильное поле во время операции [37, 38].
Типичными представителями экзогенной
флоры являются аэробы, преимущественно
грамположительные кокки – стафилококки и
стрептококки. Существует повышенный риск
развития ИОХВ: наличие у пациента
сопутствующей инфекции или колонизации
иной локализации, диабет, курение,
применение гормональных препаратов,
ожирение (>20% от “идеальной” массы тела),
крайне пожилой или ранний возраст, дефицит
питания, предшествующее операции
переливание препаратов крови [39, 40, 41, 42, 43, 44,
45].
Необходимо принимать во внимание,
что этиологический спектр микроорганизмов
определяется прежде всего видом
оперативного вмешательства, его
продолжительностью, техникой хирурга,
соблюдением мер инфекционного контроля,
длительностью пребывания пациента в
стационаре перед операцией, локальной
картиной резистентности микрофлоры к
антибиотикам и другими факторами.
Выбор препарата для антибактериальной
профилактики
Современная концепция
антибиотикопрофилактики, нашедшая
отражение в руководствах авторитетных
международных обществ, предполагает, что
микробная контаминация операционной раны
практически неизбежна даже при идеальном
соблюдении правил асептики и антисептики и
к концу операции в 80–90% случаях раны
обсеменены различной микрофлорой,
преимущественно стафилококками [46, 47]. В то
же время при проведении АБП не следует
стремиться к полной эрадикации бактерий,
так как значительное уменьшение их числа
уже облегчает работу иммунной системы и
предотвращает развитие гнойной инфекции [6,
17].
Уже накоплен достаточный опыт,
позволяющий рекомендовать введение
антибиотика не ранее чем за 1 ч до операции.
Игнорирование данного правила, а также
назначение антибиотика по завершении
операции являются неэффективными в
отношении снижения частоты
послеоперационных раневых инфекций [3, 12].
АБП проводится с целью:
• предотвращения развития
послеоперационной хирургической инфекции;
• сокращения послеоперационной
заболеваемости и летальности;
• сокращения сроков
госпитализации и стоимости лечения (при
оценке затрат на терапию пациентов с ИОХВ
данный аспект становится очевидным) [48, 49];
• уменьшения отрицательных
последствий для микрофлоры пациента и
стационара [36].
Выбор препарата для АБП должен
отвечать следующим наиболее важным
критериям [15].
• В спектр активности препарата
должны входить наиболее вероятные
возбудители послеоперационной раневой
инфекции, в первую очередь стафилококки,
так как они ответственны за 80% осложнений, а
также анаэробы, являющиеся частыми
возбудителями послеоперационной инфекции
при абдоминальных вмешательствах.
• Доза антибиотика должна
соответствовать обычной терапевтической
дозе, а временем его введения для
большинства плановых и экстренных операций
принято считать время проведения вводного
наркоза – за 30-40 мин до операции. Эти
принципы обусловлены необходимостью
создания эффективной концентрации
антибиотика в операционной ране на момент
разреза.
• Кратность введения
определяется периодом полувыведения
антибиотика. Как правило, препарат вводится
однократно. Повторная доза назначается при
продолжительности оперативного
вмешательства, превышающей в 2 раза период
полувыведения антибиотика.
• Продолжение введения
антибиотика после операции при отсутствии
прямых показаний не приводит к повышению
эффективности, так как не предотвращает
развитие ИОХВ и является нерациональным
вследствие увеличения частоты развития
нежелательных реакций, роста
антибиотикорезистентности и расходов.
• Основным путем введения
является внутривенный, что обеспечивает
оптимальную концентрацию в крови и тканях
на момент операции.
Большое количество
антибактериальных препаратов в настоящее
время считаются эффективными для
проведения АБП. Предпочтительными с точки
зрения безопасности и эффективности в
большинстве случаев являются
цефалоспорины первого и второго поколений
[50], они также относятся к наиболее
изученным при проведении профилактики в
хирургии. В исследованиях были
продемонстрированы хорошая переносимость,
адекватные фармакокинетические параметры
и оптимальная стоимость профилактики в
хирургии с применением представителей этой
группы антибиотиков [49, 51]. Цефазолин
рассматривается в качестве препарата
выбора для большинства чистых с
использованием имплантантов и условно-чистых
операций у пациентов без сопутствующих
факторов риска. При аллергии на препараты
пенициллинового ряда следует применять
антибиотики, активные в отношении
грамположительных возбудителей, например
линкозамиды, а у пациентов с высоким риском
носительства метициллинорезистентных S.
aureus (MRSA) или из отделений с высокой
частотой MRSA для АБП рекомендуется
ванкомицин [16, 17, 19, 26]. В России
распространенность штаммов MRSA составляет
33,5%, что обусловливает необходимость
включения ванкомицина в протоколы
проведения АБП в соответствующих
отделениях [52]. К сожалению, использование
ванкомицина в качестве АБП не приводит к
снижению доли MRSA в структуре ИОХВ [53].
В абдоминальной хирургии
существуют и определенные ограничения для
широкого использования цефалоспоринов с
целью АБП.
Так, при оперативных
вмешательствах с вовлечением
желчевыводящих путей, дистальных отделов
тонкого кишечника, толстого кишечника или
аппендикса необходимо использовать
антибиотики, активные в отношении как
представителей семейства Enterobacteriaceae,
так и анаэробов, в частности группы Bacteroides
fragilis [17, 19, 51]. Существуют различные схемы
АБП в абдоминальной хирургии, что
обусловлено видом оперативного
вмешательства и предполагаемым
возбудителем ИОХВ в данной анатомической
области (табл. 3). Чрезвычайно важным
является использование локальных данных о
возбудителях интраабдоминальных инфекций
и их чувствительности к антибиотикам для
рационального выбора препарата и
своевременной коррекции существующих
протоколов АБП.
Рис. 1. Классификация ИОХВ на срезе брюшной стенки [18].

Таблица 1. Классификация хирургических ран при абдоминальных операциях [16]
|
Хирургические раны |
Характеристика |
Примеры |
|
Чистые |
Неинфицированная операционная рана,
в области которой |
Грыжесечение, спленэктомия |
|
Условно-чистые |
Операционные раны с контролируемым
вскрытием просвета ЖКТ |
Пилоропластика, операции |
|
Контаминированные |
Открытые свежие травматические раны,
операции с серьезными |
Аппендэктомия (острый |
|
Грязные |
Травматические раны с
нежизнеспособными тканями, а также |
Операции по поводу перфорации полого |
Таблица 2. Наиболее частые возбудители ИОХВ [4]
|
Возбудитель |
Частота инфекций, % |
|
Staphylococcus aureus |
20 |
|
Коагулазонегативные стафилококки |
14 |
|
Enterococcus spp. |
12 |
|
Escherichia coli |
8 |
|
Pseudomonas aeruginosa |
8 |
|
Enterobacter spp. |
7 |
|
Proteus mirabilis |
3 |
|
Klebsiella pneumoniae |
3 |
|
Прочие стрептококки |
3 |
|
Candida albicans |
3 |
|
Стрептококки группы D (не энтерококки) |
2 |
|
Прочие грамположительные аэробы |
2 |
|
Bacteroides fragilis |
2 |
Таблица 3. Рекомендуемые режимы АБП при абдоминальных операциях [61-63]
|
Вид или локализация операции |
Препарат |
Доза и способ введения для взрослого |
|
Пищевод, желудок, двенадцатиперстная кишка (включая эндоскопические вмешательства), группа высокого риска1 |
Амоксициллин/клавуланат |
1,2 г, внутривенно |
|
Ампициллин/сульбактам |
1,5 г, внутривенно |
|
|
Цефуроксим |
1,5 г, внутривенно |
|
|
Желчевыводящие пути, группа высокого риска2 |
Амоксициллин/клавуланат |
1,2 г, внутривенно |
|
Ампициллин/сульбактам |
1,5 г, внутривенно |
|
|
Цефуроксим |
1,5 г, внутривенно |
|
|
Толстый кишечник |
||
|
Плановые операции |
канамицин (или гентамицин) |
1 г, парентерально |
|
+ эритромицин3 |
1 г, внутрь |
|
|
Амоксициллин/клавуланат |
1,2 г, внутривенно |
|
|
Ампициллин/сульбактам |
1,5 г, внутривенно |
|
|
Экстренные операции |
Амоксициллин/клавуланат |
1,2 г, внутривенно |
|
Ампициллин/сульбактам |
1,5 г, внутривенно |
|
|
Гентамицин5 |
0,08 г, внутривенно |
|
|
+ метронидазол |
0,5 г, внутривенно |
|
|
Герниопластика с имплантацией искусственных материалов4 |
Цефазолин |
1–2 г, внутривенно |
|
Цефуроксим |
1,5 г, внутривенно |
|
|
Аппендэктомия (аппендикс без перфорации) |
Амоксициллин/клавуланат |
1,2 г, внутривенно |
|
Ампициллин/сульбактам |
1,5 г, внутривенно |
|
|
Примечание. |
||
Предпочтительным для АБП в
абдоминальной хирургии является
амоксициллин/клавуланат в силу
недостаточной активности цефалоспоринов
первого поколения против
грамотрицательных микроорганизмов и
отсутствия на рынке цефалоспоринов второго
поколения с антианаэробной активностью [54].
Эффективность амоксициллина/клавуланата
для профилактики послеоперационной
инфекции в абдоминальной хирургии была
продемонстрирована в сравнительных
исследованиях при гастродуоденальных
вмешательствах, операциях на
желчевыводящих путях и аппендэктомии. В
рандомизированное исследование сравнения
амоксициллина/клавуланата (амоксициллин 2 г/
клавуланат 200 мг) с цефотаксимом (2 г) было
включено 476 пациентов с высоким риском
гнойных осложнений, подлежащих
интраабдоминальному вмешательству. Оба
антибиотика были назначены в виде
однократной инфузии. В группу пациентов,
которым были выполнены гастродуоденальное
хирургическое вмешательство или операции
на желчевыводящих путях, получавших
амоксициллин/клавуланат, были включены 110
пациентов и 95 – в группу цефотаксима.
Частота инфекций составила 4,5% в группе
амоксициллина/клавуланата и 7,4% в группе
цефотаксима. Различия в частоте инфекций
были статистически незначимы. Остальным 271
пациентам (135 в группе амоксициллина/клавуланата
и 136 в группе цефотаксима) было выполнено
оперативное вмешательство на нижних
отделах желудочно-кишечного тракта (включая
колоректальные вмешательства). Частота
послеоперационной инфекции составила 11 и 13%
соответственно, различия статистически
незначимы. Интраабдоминальные абсцессы
развились у 3 пациентов в группе
амоксициллина/клавуланата и у 4 пациентов в
группе цефотаксима. В обеих группах не
зарегистрировано нежелательных реакций
или диареи [55].
Эффективность амоксициллина/клавуланата
при АБП была также продемонстрирована при
сравнении последнего с цефамандолом у 150
пациентов, которым выполнялось
хирургическое вмешательство на
желчевыводящих путях. Частота
послеоперационных инфекционных осложнений
и длительность госпитализации была
одинакова в обеих группах [56].
В другом проспективном
рандомизированном многоцентровом
сравнительном исследовании PRODIGE,
проведенном на базе 19 стационаров Франции,
изучали эффективность амоксициллина/клавуланата
и цефотетана в качестве
антибиотикопрофилактики у пациентов,
которым выполнялись плановые
колоректальные операции. Целью данного
исследования было подтверждение
одинаковой эффективности обоих режимов
профилактики. В исследование были включены
208 пациентов (105 в группе, получавшей
амоксициллин/клавуланат, и 103 в группе,
получавшей цефотетан). Рак толстой кишки
был показанием к оперативному
вмешательству в 73% случаев. Развитие ИОХВ
отслеживали в течение 30 сут после операции.
У 11 пациентов, получавших амоксициллин/клавуланат,
и 13, получавших цефотетан, были
зарегистрированы послеоперационные
инфекции, различия в группах статистически
незначимы. Чаще инфекции развивались на 10-е
сутки после операции [57].
Эффективность амоксициллина/клавуланата
при плановых колоректальных операциях была
также подтверждена в другом исследовании (n=440),
сравнившем эффективность комбинации
клиндамицина и гентамицина с
амоксициллином/клавуланатом. Частота
послеоперационных интраабдоминальных
инфекций оказалась выше в группе,
получавшей комбинацию клиндамицина и
гентамицина (данные статистически
достоверны) [58].
Для оценки эффективности
амоксициллина/клавуланата в качестве
препарата для антибактериальной
профилактики при абдоминальных и
гинекологических операциях был проведен
метаанализ, в который было включено 21
рандомизированное сравнительное
проспективное исследование. В этих
исследованиях 2685 пациентов получали
амоксициллин/клавуланат и 2200 – препараты
сравнения. Использование амоксициллина/клавуланата
было также эффективно по сравнению с
другими режимами антибиотикопрофилактики (частота
послеоперационных осложнений составила 6 и
10% соответственно) [59].
Во всех перечисленных
исследованиях при одинаковой
эффективности со сравниваемыми режимами
амоксициллин/клавуланат был наиболее
удобным для дозирования и предпочтительным
с точки зрения стоимости. Приоритет
показателя стоимость – эффективность для
амоксициллина/клавуланата перед другими
антибиотиками был установлен при анализе 21
исследования режимов АБП. Только в 2 из них
стоимость профилактики амоксициллином/клавуланатом
оказалась выше по сравнению с другим
режимом. Однако в этих исследованиях
эффективность амоксициллина/клавуланата
превосходила сравниваемые режимы
антибиотикопрофилактики [60].
Таким образом, многими
исследованиями подтверждено, что с точки
зрения стоимости – эффективности
применение амоксициллина/клавуланата не
уступает другим многочисленным
рекомендованным режимам АБП в
абдоминальной хирургии. По
неопубликованным пока данным
многоцентрового проспективного
исследования резистентности возбудителей
нозокомиальных инфекций в отделениях
реанимации и интенсивной терапии (РЕЗОРТ) 21
города и 33 отделений на территории
Российской Федерации, у 166 пациентов с
интраабдоминальными инфекциями 62% штаммов E.
coli, 92% штаммов Proteus mirabilis и 60% штаммов Proteus
vulgaris были чувствительны к амоксициллину/клавуланату.
Приведенные данные определяют
приоритетное положение режимов АБП с
использованием амоксициллина/клавуланата,
рекомендованных современными
национальными руководствами по АБП, по
отношению к другим антибиотикам при
абдоминальных хирургических
вмешательствах [15].
Спектр активности амоксициллина/клавуланата
включает грамположительные кокки, в том
числе пенициллиноустойчивые штаммы S. aureus
и S. epidermidis, стрептококки и энтерококки,
большинство грамотрицательных палочек,
включая b-лактамазопродуцирующие
штаммы, а также спорообразующие и
неспорообразующие анаэробы, в том числе B.
fragilis [54].
Широкий спектр и высокая
активность в отношении наиболее частых
возбудителей инфекций в абдоминальной
хирургии, а также сравнимые с комбинациями
цефалоспоринов и метронидазола показатели
стоимость – эффективность делают
амоксициллин/клавуланат препаратом выбора
для АБП в абдоминальной хирургии.
Суммарные рекомендации по выбору
режимов АБП в абдоминальной хирургии
приведены ниже.
Заключение
Показано, что АБП является
эффективным способом профилактики
развития ИОХВ при абдоминальных
хирургических вмешательствах, особенно при
высоком риске инфекционных осложнений,
приводящих к увеличению заболеваемости и
летальности [64, 65]. Антибиотик для АБП в
абдоминальной хирургии должен быть активен
в отношении возбудителей ИОХВ в данной
анатомической области. Доза антибиотика
при АБП должна соответствовать обычной
терапевтической дозе и назначаться во
время проведения вводного наркоза, т.е. за
30–40 мин до операции. В большинстве случаев
амоксициллин/клавуланат или цефалоспорины
первого и второго поколений (или гентамицин
при аллергии на b-лактамы) в
сочетании с метронидазолом являются
достаточно эффективными. Эти простые
правила позволяют добиться снижения
частоты ИОХВ при абдоминальных операциях,
при которых использование АБП должно стать
рутинным [66]. Для многих видов вмешательств
в абдоминальной хирургии рекомендованы
разные режимы АБП, однако применение
нескольких универсальных режимов является
предпочтительным [25, 63]. Наряду с этим в
каждом хирургическом отделении должны
существовать протоколы АБП и
адаптированные рекомендации по АБП с
использованием наиболее безопасных и
эффективных с клинической и экономической
точки зрения режимов, с учетом наиболее
частых ИОХВ в данном отделении, локального
спектра возбудителей инфекций и данных по
их чувствительности к применяемым
антибиотикам.
Для обеспечения эффективного
использования рекомендаций требуется
мониторинг рутинной практики АБП как на
локальном, так и на региональном уровнях. С
этой целью следует ежегодно проводить
ретроспективную оценку последовательной
выборки историй болезни пациентов,
перенесших абдоминальное вмешательство,
для оценки качества проведения АБП. С
учетом этих исследований и результатов
изучения этиологии и чувствительности
возбудителей ИОХВ необходимо проводить
коррекцию используемых протоколов
проведения АБП. Эти меры в известной
степени позволят повысить эффективность
АБП, снизить частоту хирургических
инфекций и экономические затраты,
связанные с нерациональным назначением
антибиотиков и лечением инфекционных
осложнений в послеоперационном периоде.
Литература
1. Nichols RL. Am J Med 1998; 104: 11–16S.
2. Auerbach AD. In: Shojania KG, Duncan BW, McDonald KM et al. (eds). Making
health care safer: a critical analysis of patient safety practices. Evidence
report/technology assessment no. 43. AHRQ publication no. 01-E058. Rockville, MD:
Agency for Healthcare Research and Quality. 2001: 221–244. At: http://www.ahrg.gov/clinic/ptsafety/pdf/ptsafety.pdf.
3. Burke JP. N Engl J Med 2003; 348: 651–6.
4. National Nosocomial Infections Surveillance (NNIS) report, data summary from
October 1986-April 1996. Am J Infect Control 1996; 24: 380–8.
5. Kirkland KB, Briggs JP, Trivette SL et al. Infect Control Hosp Epidemiol
1999; 189–210.
6. Solomkin JS. Crit Care Med 2001; 29 (Suppl. 4): 97–9.
7. Стручков В.И., Гостищев В.К., Стручков Ю.В.
Хирургическая инфекция. Руководство для
врачей. 2-е изд. М.: 1991.
8. Каншин Н.Н., Воленко А.В., Файнберг К.А. и др.
Хирургия. 1991; 3: 119–23.
9. Беденков А.В. Фармакоэпидемиологическая и
фармакоэкономическая оценка
периоперационной антибиотикопрофилактики
в абдоминальной хирургии. Автореф. дис…канд.
мед. наук. Смоленск, 2003.
10. Cruse P. Rev Infect Dis 1981; 4: 734–7.
11. McGowan JE Jr. Rev Infect Dis 1991; 13 (Suppl. 10): S879–89.
12. Classen DC, Evans RS, Pestotnik SL et al. N Engl J Med 1992; 326: 281–6.
13. Stratchounski LS, Galkin D, Golub A. Clin Microbiol Infect 2005; 11
Stratchounski LS, Galkin D, Golub A. Clin Microbiol Infect 2005; 11 (Suppl. 2):
662.
14. Roy MC, Gagne E, Paradis A. Antimicrobial prophylaxis in surgery: evaluation
of practice in tertiary care hospital. 37th ICAAC: Abstracts. Toronto: 1997;
Abstr. J–158.
15. Федоров В.Д., Плешков В.Г., Страчунский Л.С.
(ред.). Периоперационная
антибиотикопрофилактика в абдоминальной
хирургии. Пособие для врачей. Смоленск: 2004.
16. Mangram AJ, Horan TC, Pearson ML et al. Infect Control Hosp Epidemiol 1999;
20: 247–80.
17. Dellinger EP, Gross PA, Bartlett TL et al. Clin Infect Dis 1994; 18:
422–7.
18. Horan TC, Gaynes RP, Martone WJ et al. Infect Control Hosp Epidemiol 1995:
16 (12): 712–6.
19. American Society of Health-System Pharmacists. ASHP therapeutic guidelines
on antimicrobial prophylaxis in surgery. Am J Health-Syst Pharm 1999; 56:
1839–88.
20. Cruse PJ. In: Wonsiewicz MJ (ed.). Infectious Diseases. Philadelphia: WB
SandersCo 1992; 758–64.
21. Altemeir WA, Bulbertson WR. In: Moyer CA, Rhoads JE, Allen JG et al. (eds).
Surgery, principles and practice. 3rd ed. Philadelphia: JB Lippincot: 1965;
51–77.
22. Schaberg DR. Ann Emerg Med 1994; 24 (3): 462–4.
23. Schberg DR, Culver DH, Gaynes RP. Am J Med 1991; 91 (3B): 72S–5S.
24. Jarvis WR. Clin Infect Dis 1995; 20: 1526–1230.
25. Wenzel RP. N Engl J Med 1992; 326: 337–9.
26. Page CP, Bohnen JMA, Fletcher JR et al. Arch. Surg 1993; 128: 79–88.
27. Gorbach SL. Gastroenterology 1971; 60: 1110–29.
28. McArdle CS, Morran CG, Pettit L et al. Br J Surg 1995; 82: 1046-8.
29. Mitchell NJ, Evans DS, Pollock D. J Antimicrob Chemother 1980; 6: 393–9.
30. Brown J, Mutton TP, Wasilauskas BL et al. Am J Surg 1982; 143: 343–8.
31. Grant MD, Jones RC, Wilson SE et al. Surg Gynecol Obstet 1992; 174:
347–54.
32. Lapointe RW, Roy AF, Turgeon PL et al. Can J Surg 1994; 37: 313–8.
33. Kellum JM, Duma RJ, Gorbach SL et al. Arch Surg 1987; 122: 918–22.
34. Muller EL, Pitt HA, Thomson JE et al. Surg Gynecol Obstet 1987; 165:
285–92.
35. Kujath P. Am J Med 1989; 87 (Suppl. 5A): 255–7.
36. Gorbach SL, Condon RE, Conte JE et al. Clin Infect Dis. 1992; 15 (Suppl 1):
S313–38.
37. Letts RM, Doermer E. J Bone Joint Surg 1983; 65: 357–62.
38. Mastro TD, Farley TA, Elliott JA et al. N Engl J Med 1990; 323: 968–72.
39. Carlsson AK, Lidgren L, Lindberg L. Acta Orthop Scand 1977; 48: 405–10.
40. Hunter JG, Padilla M, Cooper-Vastola S. Ann Plast Surg 1996; 36: 309–12.
41. Perl TM, Golub JE. Ann Pharmacother 1998; 32: S7–S16.
42. Jones JK, Triplett RG. J Oral Maxillofac Surg 1992; 50: 237–9.
43. Mishriki SF, Law DJ, Jeffery PJ. J Hosp Infect 1990; 16: 223–30.
44. Gyssens IC. Drugs 1999; 57: 175–85.
45. Casey J, Flinn WR, Yao JS et al. Surgery 1983; 6: 822–7.
46. Culberstone WR, Altemier WA, Conzalez LL et al. Ann Surg 1961; 154:
599–610.
47. Howe CW, Marston AT. Surg Gynecol Obstet 1962; 115: 266–75.
48. Boyce J, Potter-Bynoe G, Dziobek L. Infect Control Hosp Epidemiol 1990; 11:
89–93.
49. Roach A, Kernodle D, Kaiser A. Ann Pharmacother 1990; 24: 183–5.
50. Talbot TR, Kaiser AB. In: Mandell GL, Douglas RG Jr, Bennet JE., eds.
Principles and practice of infectious diseases. 6th ed. Elsevier Churchill
Livingstone. 2005; 3533–45.
51. Kaiser AB. N Engl J Med 1986; 315: 1129–38.
52. Дехнич А.В., Эйдельштейн И.А., Нарезкина А.Д.
и др. Клин. микробиол. и антимикроб. химиотер.
2002; 4: 325–36.
53. Nichols RL, Condon RE, Barie PS. Surg Infect 2005; 6: 349–61.
54. Страчунский Л.С., Козлов С.Н. Современная
антимикробная химиотерапия. Руководство
для врачей. М.: Боргес, 2002.
55. Tonelli F, Mazzei T, Novelli A et al. J Chemother 2002; 14(4): 366–72.
56. Krige JE, Isaacs S, Stapleton GN, McNally J. J Hosp Infect 1992; 22 (Suppl
A): 33–41.
57. Arnaud JP, Bellissant E, Boissel P et al. J Hosp Infect 1992; 22 (Suppl A):
23–32.
58. Mosimann F, Cornu P, N'Ziya Z. J Hosp Infect 1997; 37(1): 55–64.
59. Wilson AP, Shrimpton S, Jaderberg M. J Hosp Infect 1992; 22 (Suppl A): 9-21.
60. Davey PG, Parker SE, Crombie IK, Jaderberg M. Pharmacoeconomics 1995; 7 (4):
347–56.
61. Taylor EW. In: Finch RG, Greenwood D, Norrby SR, Whitley RJ, eds. Antibiotic
and Chemotherapy. Anti-infective agents and their use in therapy. 8th ed. London:
Churchill Livingstone, 2003; 526–43.
62. Medical letter. Med Lett Drugs Ther 2001; 43: 92–7.
63. Scottish Intercollegiate Guidelines Network (SIGN). Antibiotic Prophylaxis
in Surgery. A national clinical guideline. SIGN Publication N 45, 2000.
64. Bratzler DW, Houck PM. Clin Infect Dis 2004; 38: 1706–15.
65. Nichols RL. Emerg Infect Dis 2001; 7: 220–4.
66. Antibacterial prophylaxis in surgery: 1 – Gastrointestinal and biliary
surgery. Drug and Therapeutics Bulletin. 2003; 41: 83–6.
|
|
| © Издательство Media Medica, 2000. Почта :: редакция, webmaster |